隨著分子生物學的發展，核酸編輯、擴增、測序、鑒定等以核酸為中心的技術變得越來越先進和方便，尤其是單細胞RNA測序、數字PCR和轉基因技術的出現，使得核酸技術應用越來越廣泛，靈敏度也越來越高。

但同時也產生一些弊端，主要是：

1）PCR實驗造成DNA大量合成，不可避免地給實驗室帶來核酸污染。由于核酸產物不能自動降解，因此只會不斷積聚；

2）由于靈敏度升高，少量污染的DNA或RNA分子也會被檢測出來，從而造成實驗偏差。

3）核酸污染也給實驗人員帶來未知的健康風險。

而傳統的紫外照射法對祛除DNA污染并不理想，因為它僅對500bp以上長片段有效，對短片段效果不大。

那么，有沒有一種更好的方法呢？

Mynox® Gold 殺滅支原體 步驟詳解

 

Mynox® Gold含惟一的支原體殺除劑（而非抑制劑）Mynox®以及復合抗生素，用于祛除污染珍貴細胞或病毒種子批中的支原體和保種用。一個療程它由1管*治療液和3管主治療液，每管均為520μl即用型無菌溶液，2℃~8℃避光保存。*治療液可以殺滅大部分支原體，對細胞沒有毒害，主治療液殺滅所有剩余的支原體，實現**。

其操作示意圖如下：

 

實驗所需耗材：25cm2
細胞培養瓶或60 mm 培養皿

支原體消除結果評估：采用支原體檢測試劑盒如Venor® GeM系列。

具體操作步驟如下（超凈臺內操作）：

1. 制備“*治療混合液”

1）吸量管吸取4.5ml含5%胎牛血清的細胞培養基，加入到無菌的15ml離心管中。再加入500 µl Mynox ® Gold*治療液（橘黃色蓋）。

2）將15ml離心管內的培養基和Mynox® Gold*治療液混勻。

3）將15ml離心管內的混合液（5ml）轉移至無菌的25cm2細胞培養瓶或60 mm 培養皿中。

2. 加入細胞

按細胞正常傳代來操作。對于貼壁細胞，使用胰酶將細胞解離打散。

1）注意：顯微鏡下觀察，確保為單細胞懸液，無細胞成團。

2）吸量管吸取5ml單細胞懸液（含104–105細胞，細胞培養基含5%胎牛血清），加入到上述的“*治療混合液”中。此時總體積為10ml。

注意：加入細胞時，吸頭插入到液面下，以避免產生氣溶膠。吸頭不要觸及培養瓶/皿的內壁。

3）輕輕搖晃培養瓶/皿，以避免細胞分布不均。將細胞轉至孵箱正常培養。

3. 主要治療

1）細胞長至80~90%匯合。

2）細胞正常傳代。取9.5ml已加新鮮培養基的細胞，加到無菌培養瓶或培養皿中。再加入500 µl Mynox® Gold主治療液（透明管蓋）。調整胎牛血清濃度，不再將其濃度保持在5%，可恢復正常濃度。

3）加入主治療液的細胞繼續培養，再重復以上步驟2次（采用Mynox® Gold主治療液 治療2次）。

第3次主治療液治療后，支原體即*去除（細胞總共傳了4代）

4. 支原體殘留的檢測

注意：支原體被Mynox®裂解后會釋放DNA到培養基中，此時檢測支原體會導致假陽性。應再正常培養四代后檢測支原體。培養基更換和使用外源DNA酶可在1-2代內降低游離的支原體DNA。

建議采用高靈敏度的Venor ® GeM支原體檢測試劑盒檢查支原體。